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產品名稱:

高致病禽流感病毒H7亞型HP-H7熒光PCR試劑盒

產品型號: 產品時間: 2023-07-05
高致病禽流感病毒H7亞型HP-H7熒光PCR試劑盒根據高致病性H7亞型禽流感HA 基因裂解位點設計特異性引物和探針, 在反應體系中含高致病 H7 亞型禽流感病毒基因組模板的情況下,PCR 反應得以進行并釋放熒光信號。利用儀器對 PCR 過程中相應通道的信號強度進行實時監測和輸出, 實現檢測結果的定性、定量分析。

產品概述

高致病禽流感病毒H7亞型HP-H7熒光PCR試劑盒說明書

【產品名稱】

商品名稱:高致病性禽流感病毒 H7 亞型(HP-H7)核酸檢測試劑盒(熒光-PCR 法)

Name :Highly Pathogenic Avian Influenza Virus subtype H7 Detection Kit (Real-Time PCR Method)

【包裝規格】48T/盒

【預期用途】

禽流感是由正粘病毒科流感病毒屬的 A 型流感病毒引起的一種禽類或人類感染的傳染病,分為非致病性、低致病性和高致病性三類[1]。高致病性禽流感是家禽的重要烈性 傳染病,發病率和病死率可高達 100%,對養禽業危害極大。H7 亞型禽流感因 HA 基因裂解位點的差異表現為高低致病性,及時檢測 H7 亞型流感致病性具有重要意義。

本試劑盒利用實時熒光 PCR 原理,檢測高致病 H7 亞型禽流感病毒,對高致病H7 亞型禽流感引起的流感的診斷有重要指導意義。

【檢驗原理】

本試劑盒根據高致病性H7 亞型禽流感HA 基因裂解位點設計特異性引物和探針, 在反應體系中含高致病H7 亞型禽流感病毒基因組模板的情況下,PCR 反應得以進行并釋放熒光信號。利用儀器對 PCR 過程中相應通道的信號強度進行實時監測和輸出, 實現檢測結果的定性、定量分析。

【試劑組成】

名 稱

規 格

酶液

50μL×1 管

HP-H7 反應液

1.0mL×1 管

HP-H7 陽性質控品

50μL×1 管

陰性質控品

250μL×1 管

注:

1) 不同批號試劑不能混用。

2) 試劑盒內各試劑組份足夠包裝規格所標示的檢測次數。

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融次數不超過 5 次,有效期 12 個月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

【標本采集】

病死或撲殺禽,取喉氣管、腦、胸肌、心肌和肺等組織;待檢活禽,用棉拭子取呼吸道分泌物或排泄物,置于 1mL 50%甘油生理鹽水中。

【保存和運輸】

上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個月,標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸,嚴禁反復凍融。

【使用方法】

1. 樣品處理(樣本處理區)

1.1 樣本前處理

每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g,手術剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續研磨,待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中;棉拭子直接取 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。

1.2 RNA 提取

推薦采用上海晅科生物科技有限公司生產的RNA 提取試劑盒(離心柱提取法),請按照試劑盒說明書進行操作。

2. 試劑配制(試劑準備區)

根據待檢測樣本總數,設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照;樣品每滿7 份,多配制 1 份),每測試反應體系配制如下表:

試劑

HP-H7 反應液

酶液

用量

20μL

1μL

將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中,21uL/管。

3. 加樣(樣本處理區)

將步驟 1 提取的 RNA、陽性質控品、陰性質控品各取 4μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。

4. PCR 擴增(核酸擴增區)

4.1 將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內;

4.2 設置好通道、樣品信息,反應體系設置為 25μL;熒光通道選擇:

檢測通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列儀器請勿選擇ROX 參比熒光,選擇 None 即可。

4.3 推薦循環參數設置:

步驟

循環數

溫度

時間

收集熒光信號

1

1 cycle

42℃

20min

2

1 cycle

95℃

10min

3

40 cycles

94℃

15sec

55℃

30sec

5. 結果分析判定

5.1 結果分析條件設定

設置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現整體傾斜時,根據分析后圖像調節 Baseline 的start 值(一般可在 3~15 范圍內調節)、

stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結果。

5.2 結果判斷

陽性:檢測通道 Ct 值≤35.0,且曲線有明顯的指數增長曲線。

可疑:檢測通道 Ct 值>35.0,且出現典型擴增曲線的樣本建議重復試驗,重復試驗結果出現 Ct 值≤35.0和明顯擴增曲線者為陽性,否則為陰性。

陰性:樣本檢測結果無 Ct 值且無明顯的擴增曲線。

6. 檢測方法的局限性

Ø 樣本檢測結果不樣本收集、處理、運送以及保存質量有關;

Ø 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;

Ø 陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;

Ø 病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果;

Ø 不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;

Ø 試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果。

7. 質控標準

陰性質控品:無明顯擴增曲線且無 Ct 值顯示;

陽性質控品:擴增曲線有明顯指數生長期,且 Ct 值≤32; 以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。

【注意事項】

Ø 所有操作嚴格按照說明書進行;

Ø 試劑盒內各種組分使用前應自然融化,*混勻并短暫離心;

Ø 反應液應避光保存;

Ø 反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

Ø 使用一次性吸頭、一次性手套和各區與用工作服;

Ø 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染;

Ø 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;

Ø 試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。

【參考文獻】

  • Chaharaein B, Omar A R, Aini I, Yusoff K, Hassan S S. Detection of H5, H7 and H9 subtypes of avian influenza viruses by multiplex reverse transcription polymerase chain reaction. Microbiological Research, 2009, 164(2): 174-179.
  • Chmielewski R, Swayne D E. Avian influenza: public health and food safety concerns. Annual Review of Food Science and Technology, 2011, 2:37-57.

【生產企業】

企業名稱:上海烜雅生物科技有限公司

 

公司優勢:
1)質量:我司提供的的試劑為世界
2)價格:價格實惠,量大從優。
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此外公司還提供:

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